DISTRIBUCIÓN DE NANOFANERÓFITAS DE HOJAS SUCULENTAS
EN DOS COMUNIDADES LEÑOSAS DEL CHACO SEMIÁRIDO
SALINO
DISTRIBUTION OF
PLANT COMMUNITIES OF THE
María E. Figueroa*, Juana G. Moglia, Guido Lorenz y Ana M. Giménez
Instituto de Silvicultura y Manejo de Bosques, Facultad de Ciencias Forestales, Universidad Nacional de Santiago del Estero. Av. Belgrano (s) 1912, CP 4200, Santiago del Estero, Argentina
*meugeniaf83@gmail.com
Citar este artículo
FIGUEROA, M. E., J. G. MOGLIA, G. LORENZ & A. M. GIMÉNEZ. 2019. Distribución de nanofanerófitas de hojas suculentas en dos comunidades leñosas del Chaco semiárido salino. Bol. Soc. Argent. Bot. 54:
DOI: http://dx.doi. org/10.31055/1851.2372.v54. n2.24372
Recibido: 26 Octubre 2018
Aceptado: 29 Marzo 2019
Publicado: 30 Junio 2019
Editor: Guillermo Funes
ISSN versión impresa
SUMMARY
Background and aims: In the
M&M: Sampling of woody plant and soil was carried out in both a scrubland and a xerophilous forest on 25 subplots of 100 m2 at each site. Soil electrical conductivity and pH were determined down to a depth of 50 cm. Stratification and plant cover, abundance, species richness and diversity index were described. The degree of similarity between sites was evaluated according to the number of nanophanerophyte and
Results: Richness, diversity and structural complexity were greater in the forest. The similarity between sites was low.
Conclusion: The distribution of
KEY WORDS
Nanophanerophytes, salinity,
RESUMEN
Introducción y objetivos: En los hábitats salinos del Chaco semiárido es frecuente la presencia de la forma de vida nanofanerófita y el tipo de consistencia de hoja suculenta. Para determinar si la ocurrencia de ambos rasgos está relacionada a la salinidad del suelo, en este trabajo se describe la distribución de formas de vida y tipos de consistencia de hoja en relación a la salinidad del suelo entre dos comunidades leñosas.
M&M: Se realizó un censo de leñosas y un muestreo de suelo en un matorral halófilo y en un bosque xerófilo sobre 25 subparcelas de 100 m2 en cada sitio. Se determinó pH y conductividad eléctrica del suelo hasta 50 cm de profundidad. Se describieron la cobertura y estratificación de la vegetación, riqueza, abundancia e índice de diversidad para especies leñosas. Se evaluó el grado de similitud entre sitios según la cantidad de especies de nanofanerófitas y de hoja suculenta compartidas, mediante el coeficiente de Sørensen. Las especies fueron agrupadas considerando simultáneamente su forma de vida y tipo de consistencia de hoja. La relación entre salinidad y grupos de leñosas se evaluó mediante un análisis de redundancia.
Resultados: La riqueza, diversidad y complejidad estructural fueron mayores en el bosque. La similitud entre sitios fue baja. Las nanofanerófitas de hojas suculentas dominaron en el matorral con elevada salinidad y pH. Las microfanerófitas de hojas
Conclusión: La distribución de las nanofanerófitas de hojas suculentas presentó diferencias según la salinidad del suelo de ambas comunidades leñosas.
PALABRAS CLAVE
Leñosa, nanofanerófita, salinidad, semiárido, suculenta.
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INTRODUCCIÓN
La salinización del suelo es frecuente en las regiones áridas y semiáridas. Los ambientes semiáridos salinos presentan una alta heterogeneidad ambiental dada por la variabilidad espacio temporal de los factores edáficos en general y de las sales solubles en particular (Schofield & Kirkby, 2003; Yang et al., 2011; Bui, 2013; Panta et al., 2014). Existe un vasto conocimiento en cuanto a riqueza, diversidad, composición, endemismos, rasgos funcionales, cobertura, estructura y fisionomía de la vegetación de hábitats salinos semiáridos y su variación a lo largo de gradientes de salinidad
&Flowers, 2013; Atia et al., 2014). Numerosos estudios se han realizado en diferentes ecosistemas salinos áridos y semiáridos del planeta intentando comprender de qué manera la heterogeneidad ambiental influye en los patrones de distribución de la vegetación y los mecanismos por los cuales las especies logran establecerse (Larcher, 1977; Grigore et al., 2010; Piernik, 2003; Bui, 2013).
El rol ecológico de cada una de estas especies dependerá en gran medida de sus características morfológicas más sobresalientes, como tamaño individual, arquitectura, forma de vida y densidad (Chapin, 1993; Bertiller et al., 2004).
En los distritos halofíticos del Chaco semiárido (Ragonese & Castiglione, 1970) dos tipos de rasgos que se destacan entre las especies leñosas dominantes son la forma de vida y el tipo de consistencia de hoja. Dominan dos formas de vida: una especie de microfanerófita, Prosopis ruscifolia (Fabaceae) y nanofanerófitas suculentas de la familia Chenopodiaceae. Las especies están distribuidas en las siguientes unidades ambientales: del Salado, con Prosopis ruscifolia y Allenrolfea vaginata; Mar Chiquita, con Salicornia ambigua; Salinas Grandes, con Allenrolfea patagonica y Heterostachys ritteriana. Prosopis ruscifolia tolera concentraciones salinas equivalentes al agua de mar (Meloni et al., 2008) y presenta un rápido crecimiento (espesor medio de anillos de 5,66
mm)comparado con otras especies del género y otras especies arbóreas principales de la región
Chaqueña semiárida (Ríos et al., 2008; Giménez et al., 2009). Crece en suelos salinos asociados
a llanuras de inundación y forma bosques bajos, puede presentar porte arbustivo o arbóreo según el tipo de hábitat (Giménez et al., 2009; Giménez & Moglia, 2003). Allenrolfea vaginata es una especie de porte arbustivo de crecimiento bajo a medio (espesor medio de anillos de 3,85 mm) y posee hojas suculentas (Giménez et al., 2008). Ambas especies presentan una alta capacidad de colonizar suelos afectados por sales solubles, ocupando extensas superficies dando lugar a ´vinalares´ (P. ruscifolia) y ´jumeales´ (A. vaginata), nombres que reciben localmente estas comunidades vegetales (Cabrera, 1976; Giménez & Moglia, 2003; Astrada & Adámoli, 2005).
Otro rasgo recurrente que comparten las especies que crecen en suelos extremadamente salinos es la hoja suculenta. Las halófitas de hojas suculentas poseen un rol ambiental destacado en la fitorremediación y desalinización de suelos afectados por sales y metales pesados, gracias al mecanismo de dilución de sales en las hojas (Türkan & Demiral, 2009; Ruan et al., 2010; Panta et al., 2014; Nouri et al., 2017). La importancia de identificar patrones recurrentes entre los rasgos de las plantas dominantes en diferentes condiciones ambientales, radica en poder predecir la magnitud y tendencia de los procesos ecosistémicos (Díaz
&Cabido, 1997). En la vegetación halofítica del
&Cabido, 1997).
Sin embargo, son escasos los estudios sobre la relación entre los rasgos de la vegetación leñosa, la heterogeneidad ambiental y los procesos ecológicos dentro de los hábitats salinos del Chaco semiárido. En estos hábitats, la alta recurrencia de la forma de vida nanofanerófita y el tipo de consistencia de hoja suculenta, permitiría agrupar a las especies que comparten ambos rasgos en un tipo funcional respuesta a condiciones de salinidad. Para analizar esta relación, en este trabajo se describe simultáneamente la distribución de formas de vida y tipos de consistencia de hoja en relación a variaciones locales de la salinidad del suelo entre dos comunidades leñosas de un hábitat salino semiárido.
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MATERIALES Y MÉTODOS
Sitio de estudio
El área de estudio se ubica sobre la unidad geomorfológica del valle fluvial del río Salado, en la antigua llanura aluvial del río Mailín, departamento Salavina, provincia de Santiago del Estero, Argentina.
El clima es semiárido, mesotermal con una temperatura media anual de 20,8 °C. La precipitación media anual es de 650 mm, la evapotranspiración media anual es de 1450 mm, con un déficit climático medio anual de 800 mm (Prieto et al., 2006).
El río Mailín es un curso de agua estrecho que se formó por desbordes del río Salado, pero que en la actualidad no transporta agua (Subsecretaría de Recursos Hídricos de la Nación Argentina, 1979). Las poblaciones humanas locales utilizan algunos sectores del cauce como aguadas para los animales y huertos para el consumo familiar.
La vegetación corresponde al distrito halofítico del Salado del Chaco semiárido. En el cauce propiamente dicho la vegetación es abierta con escasa cobertura arbórea, algunos árboles emergentes y un estrato arbustivo bajo. A ambos lados del cauce existen albardones de relieve convexo originados por la acumulación de material fluvial, los cuales, al estar cubiertos por vegetación forman islas dentro de la llanura aluvial. La llanura propiamente dicha es el elemento del paisaje de mayor extensión superficial. Se extiende a ambos lados del cauce. Presenta una matriz de suelo desnudo con pequeños montículos (de menor dimensión y diferente origen que los albardones) sobre los cuales crecen matas de Allenrolfea vaginata, cactus arborescentes y algunos individuos aislados de especies arbóreas, principalmente Prosopis ruscifolia. La vegetación contigua a la llanura, hacia el este, es un bosque xerófito bajo y abierto de Schinopsis lorentzii y Aspidosperma quebracho blanco, y hacia el oeste, es un bosque de similares características pero que a diferencia del primero, se ubica en un relieve deprimido que recibe inundaciones en épocas de crecientes del río Dulce.
Este trabajo se realizó en dos de las comunidades leñosas descriptas asociadas a la influencia del río Mailín: el matorral de Allenrolfea vaginata de la antigua llanura aluvial, por ser de mayor extensión,
y el bosque xerófilo contiguo a la llanura hacia al este, por estar ubicado sobre un relieve más estabilizado que no está sujeto a inundaciones. Las variaciones de relieve y mircorrelieve entre ambas comunidades pueden ser significativas tanto para la distribución de las sales en el suelo, como para la vegetación. Con el objetivo de describir la distribución de grupos de leñosas con rasgos morfológicos comunes y su relación con variaciones locales de la salinidad del suelo, se seleccionaron el matorral y el bosque por ser comunidades contiguas y con características contrastantes a pesar de pertenecer a la misma unidad ambiental.
El suelo es salino en ambos sitios ocupados por los dos tipos de vegetación. En el matorral, el suelo es un Fluvic Solonchak (Siltic) (IUSS Working Group WRB, 2014) / Aridic Ustifluvent (Soil Taxonomy, 2014). En el bosque, el suelo es un Haplic Solonchak (IUSS Working Group WRB, 2014) / Aridic Ustiorthent (Soil Taxonomy, 2014) (descripción realizada en estudios previos según las terminologías de IUSS Working Group WRB, 2014, Soil Taxonomy, 2014 y Moscatelli, 1990). Ambos sitios se ubican a una distancia aproximada de 2 km uno de otro (28°49’1.25”S, 63° 9’41.30”O, Fig. 1A; 28°48’14.76”S, 63° 9’5.04”O, Fig. 1B).
Muestreo y análisis de datos
En cada comunidad se muestreó el suelo y la vegetación leñosa en un área de 50 m × 50 m, que fue subdividida en 25 parcelas de 10 m × 10 m. En cada parcela se contaron los individuos de las especies leñosas (arbustos y árboles) mayores de 20 cm de altura.
El muestreo de suelo se realizó en cada parcela extrayendo tres muestras al azar. Las muestras se tomaron en dos profundidades: 0 a 20 cm y 20 a 50 cm. Para ello se emplearon dos barrenos de 1,4 cm de diámetro. Las tres muestras tomadas al azar en cada parcela conformaron una misma muestra compuesta por parcela y profundidad. Las muestras se llevaron al laboratorio, se secaron al aire y se tamizaron a través de una malla de 2
mm.Se prepararon suspensiones de proporción de proporción suelo / agua de 1:2,5, 15 mL de agua destilada a 6 g de suelo. Como parámetros del suelo se determinaron la salinidad, mediante la conductividad eléctrica (CE, dS/m), y el pH, en un extracto 1:2,5. La denominación de ambos parámetros fue la siguiente, según la profundidad
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Fig. 1. Comunidades leñosas estudiadas. A: Matorral halófilo de Allenrolfea vaginata y Prosopis ruscifolia. B: Bosque bajo con influencia salina de Schinopsis lorentzii y Aspidosperma quebracho blanco.
analizada: CE20 y pH20, de
se realizó mediante la siguiente ecuación:
Ve = ( ( Vi ×2 )+ ( Vj ×3 ) )/5
Dónde:
Ve = valor de la variable edáfica (CE; pH) ponderado por la profundidad
Vi = valor de la variable edáfica (CE; pH) medido en la profundidad
Vj = valor de la variable edáfica (CE; pH) medido en la profundidad
Las variables CE, pH y sus valores medios ponderados se compararon estadísticamente entre sitios mediante una prueba T para muestras independientes, calculada con el programa Infostat (Di Rienzo et al., 2014).
Para caracterizar la vegetación del matorral y del bosque se realizó una estimación visual de la cobertura según los grados y porcentajes de cobertura de la clasificación de Margalef (1974); de la estratificación horizontal considerando las clases cerrada, abierta, dispersa; y de la estratificación vertical según los estratos arbóreo, arbustivo, herbáceo y de cactáceas, para este último se registró la presencia de especies de la familia Cactaceae. La nomenclatura se consultó en las páginas en línea de Flora Argentina (2017) y The Plant List (2013).
Con base en el relevamiento de especies se caracterizó la riqueza y diversidad de leñosas de cada sitio. Se determinó la abundancia, riqueza e índice de diversidad Shannon- Wiener (H´) por parcela y por sitio. Los cálculos se realizaron con las funciones ´specnumber´ y ´diversity´ del paquete estadístico ´vegan v.
Las especies se clasificaron según la consistencia de la hoja y la forma de vida. Las categorías consideradas para el rasgo consistencia de hoja fueron: suculenta o carnosa, coriácea y
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La asignación de rasgos a las especies se realizó a partir de observaciones en campo, referencias bibliográficas y descripciones botánicas (Ragonese, 1951; Miller, 1989; Cavanna et al., 2010; Arambarri et al., 2011; Arambarri et al., 2012; Pérez Cuadra & Cambi, 2014; Flora Argentina, 2017).
Teniendo en cuenta que la forma de vida nanofanerófita y la hoja suculenta son los rasgos más recurrentes en los hábitats salinos, se evaluó el grado de similitud entre ambas comunidades en cuanto a dichos rasgos. Para ello, se adaptó el cálculo del coeficiente de similitud de Sørensen cuantitativo (IScuant) para ambos rasgos por separado (Moreno, 2001; Magurran, 2004). Este coeficiente expresa el grado en el que dos muestras son semejantes por las especies presentes en ellas (Moreno, 2001). El calculó se realizó con base en la composición florística global y en las abundancias por especie de cada comunidad leñosa, considerando el número total de individuos contabilizados en cada sitio y la abundancia por especie de hoja suculenta (IScuantS) y nanofanerófita (IScuantN )compartida entre ambos sitios, según la siguiente ecuación:
IScuant = 2 pN / (aN +bN)
Dónde:
aN = número total de individuos en el sitio A bN = número total de individuos en el sitio B
pN = suma de la menor de las dos abundancia para las especies de hojas suculentas / nanofanerófitas encontradas en ambos sitios
Existe una mayor similitud entre sitios cuando el valor del índice es cercano a 1 (Moreno, 2001).
Las especies leñosas relevadas en ambos sitios se agruparon según rasgos comunes. Para ello se construyó una tabla de doble entrada con las categorías de forma de vida y tipo de consistencia de hoja. En cada combinación de categorías se colocó el número de especies presentes, a las cuales luego se le asignó un número de grupo. La abundancia absoluta de cada grupo dentro de una parcela fue la suma de los individuos de las especies que conforman un grupo. La abundancia relativa fue la proporción de este valor respecto al número total de individuos de cada parcela. Para evaluar si la abundancia de los grupos de leñosas difiere entre ambos sitios o comunidades leñosas se realizó un PERMANOVA (Análisis permutacional multivariado
de varianza) empleando la función ´adonis´ del paquete estadístico ´vegan´ considerando la matriz de abundancias relativas de cada grupo de leñosas por parcela en función de cada sitio.
La relación entre los grupos definidos y las variables edáficas se evaluó mediante un análisis de redundancia (RDA). El RDA se realizó con la función ´rda´ del paquete ´vegan´ antes citado. El análisis se realizó con dos matrices primarias: a) matriz de abundancia de leñosas por grupo, parcela y sitio; b) matriz de variables edáficas con los valores de CE20, pH20, CE50 y pH50, por parcela y sitio. Las variables se estandarizaron siguiendo las recomendaciones de Oksanen et al. (2018), usando la matriz de correlaciones, en lugar de la matriz de varianzas, para evitar que las variables con alta varianza afecten a las menos variables y obtener una ordenación balanceada. La salida del RDA se representó en un gráfico biplot. La significancia del RDA se evaluó a través de un test de permutaciones (Oksanen et al., 2018).
RESULTADOS
El suelo del matorral presentó mayor salinidad y alcalinidad que el suelo del bosque, en el perfil analizado (0 a 50 cm), según los valores de CE y pH ponderados (Tabla 1). Esta condición del suelo sugiere un hábitat más estresante en el matorral. En la figura 2 se muestran los valores de CE obtenidos por parcela, profundidad y tipo de comunidad vegetal. Los valores de CE dentro de cada sitio mostraron una alta variabilidad entre las parcelas en ambas profundidades (alto coeficiente de variación). En ambos sitios la CE entre los 20 y 50 cm de profundidad fue aproximadamente el doble que la registrada en los primeros 20 cm.
La cobertura vegetal en la parcela del matorral fue entre el 25 y 30 %, grado 3 en la escala de Margalef (1974). La estructura horizontal fue dispersa, con parches vegetados intercalados con suelo desprovisto de vegetación vascular. Se identificaron tres estratos vegetales: i) inferior, de gramíneas y crasas; ii) arbustivo, de < 2,5 metros de altura; iii) estrato de cactáceas. Entre las especies de Cactaceae se identificaron las siguientes: Echinopsis rhodotricha (´alao´), Echinopsis leucantha (´sitki´), Gymnocalycium schickendantzii (´miyoga´), Cleistocactus baumannii (´ullivincha´), Opuntia quimilo (´quimil´) y Stetsonia coryne (´cardón´).
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Tabla 1. Valores de CE (dS/m) y pH del suelo del matorral y del bosque. Se presenta valor de: Media aritmética ± desvío estándar (sd)
Suelo |
Matorral halófilo |
|
|
Bosque xerófilo |
|
CE20 |
12,83 ± 11,02 |
10,22 ± 6,51 |
|||
CE50 |
36,89 ± 12,04 |
21,5 ± |
10,75 |
||
CEp |
27,27 ± 9,37 |
16,98 |
± 8,87 |
||
pH20 |
9,62 ± 0,45 |
7,57 |
± 0,83 |
||
pH50 |
9,25 ± 0,62 |
7,84 |
± 0,63 |
||
pHp |
9,4 ± 0,47 |
7,73 |
± 0,68 |
||
|
|
|
|
|
|
Fig. 2. Valores de conductividad eléctrica (dS/m) medidos en dos profundidades, CE20 y CE50, en el suelo del matorral (A) y del bosque (B). Umbrales críticos de salinidad de 8 dS/m (con pH ≥ 8.5) y 15 dS/m (FAO, 2006).
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El bosque presentó una cobertura vegetal entre el 50 y 75 %, grado 4 de la escala de Margalef (1974). La estratificación horizontal fue abierta. Los estratos verticales se clasificaron en: i) estrato arbóreo, con ejemplares emergentes aislados de Schinopsis lorentzii y Aspidosperma quebracho- blanco, cuya altura media fue de 10 metros;
ii)estrato arbóreo secundario, con Prosopis nigra, Ziziphus mistol y Senegalia praecox; iii) estrato arbustivo, con Celtis pallida, Atamisquea emarginata y Maytenus
Las leñosas relevadas en total fueron 31 especies entre ambos sitios, 18 en el matorral y 28 en el bosque (Tabla 2). En las figuras 3 y 4 se muestran imágenes de las especies con hojas suculentas. El índice de diversidad H´ promedio y la riqueza media fueron significativamente mayores en el bosque que en el matorral (Tabla
2). La densidad de especies en el matorral fue de alrededor de 7 especies por 100 m2; en tanto que en el bosque la densidad de especies fue de 10 especies por 100 m2. En el matorral predominaron, sobre el total de individuos contabilizados, los individuos leñosos con hojas suculentas (84 %), seguidos por los de hojas
El grado de similitud entre el bosque y el matorral fue bajo (menor a 1) según el coeficiente de Sørensen calculado para las especies de hojas
suculentas (IScuantS= 0,23) y nanofanerófitas (IScuantN= 0,24). Es decir que ambos sitios poseen un bajo número de especies de hojas suculentas y nanofanerófitas en común.
La asociación entre los caracteres forma de vida y consistencia de hoja fue significativa según el análisis de la tabla de contingencia (p= 0,01) lo que permitió clasificar a las 31 especies relevadas en seis grupos (Tabla 3) considerando simultáneamente ambos rasgos: G1 (9 especies) microfanerófitas
En las Tablas 4 y 5 se muestran la abundancia relativa y absoluta de cada grupo de leñosas por parcela en el matorral y en el bosque respectivamente. Los grupos más representativos fueron el G1, G3 y G6. El grupo G1 de las microfanerófitas
El RDA explicó el 25 % de la variancia total (Fig. 5). El RDA1 fue el único eje significativo, p= 0,001, y explicó el 22 % de la variabilidad total. Las variables edáficas que mejor explicaron la distribución de los grupos de especies fueron la CE50, p= 0,001 y el pH20, p= 0,001. Las nanofanerófitas de hojas suculentas (G3), las de hojas
El eje RDA1 sugiere un gradiente de salinidad marcado por el pH20 y la CE entre los 20 y 50 cm de profundidad. En dicha profundidad la CE tuvo los valores más elevados de todo el perfil en ambos sitios. Respecto al mismo eje, el grupo G3 presentó la mayor correlación positiva y el grupo G1 la mayor correlación negativa. Es decir, los grupos G3 y G1 se ubicaron en los extremos del gradiente de salinidad. Los cambios en la abundancia relativa de ambos grupos indican
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Tabla 2. Listado de especies leñosas relevadas por sitio. Riqueza (S), abundancia e índice de diversidad (H´). Densidad de individuos expresada en número de individuos por hectárea; sd (desvío estándar). * Diferencias significativas según prueba T para muestras independientes, nivel de significación α= 0,05.
Familia |
Especie |
Consistencia |
Forma de vida |
Densidad de |
||
Matorral |
Bosque |
|||||
de hoja |
||||||
|
|
|
||||
|
|
|
|
halófito |
xerófito |
|
AMARANTHACEAE |
Alternanthera nodifera |
Suculenta |
Caméfita |
20 |
0 |
|
ANACAMPSEROTACEAE |
Grahamia bracteata |
Suculenta |
Nanofanerófita |
564 |
264 |
|
ANACARDIACEAE |
Schinopsis lorentzii |
Mesofanerófita |
0 |
40 |
||
ANACARDIACEAE |
Schinus bumelioides |
Microfanerófita |
0 |
4 |
||
APOCYNACEAE |
Aspidosperma |
Coriácea |
Mesofanerófita |
4 |
112 |
|
quebracho- blanco |
||||||
|
|
|
|
|
||
APOCYNACEAE |
Vallesia glabra |
Microfanerófita |
0 |
4 |
||
ASTERACEAE |
Cyclolepis genistoides |
Suculenta |
Nanofanerófita |
8 |
20 |
|
BORAGINACEAE |
Ehretia cortesia |
Suculenta |
Caméfita |
0 |
24 |
|
CAPPARACEAE |
Atamisquea emarginata |
Coriácea |
Nanofanerófita |
16 |
956 |
|
CELASTRACEAE |
Maytenus |
Suculenta |
Nanofanerófita |
0 |
152 |
|
CELASTRACEAE |
Maytenus spinosa |
Coriácea |
Microfanerófita |
0 |
20 |
|
CELTIDACEAE |
Celtis pallida |
Microfanerófita |
8 |
1036 |
||
CHENOPODIACEAE |
Allenrolfea vaginata |
Suculenta |
Nanofanerófita |
2476 |
516 |
|
FABACEAE |
Prosopis sericantha |
Nanofanerófita |
72 |
32 |
||
FABACEAE |
Prosopis reptans |
Nanofanerófita |
512 |
0 |
||
FABACEAE |
Prosopis vinalillo |
Coriácea |
Microfanerófita |
16 |
20 |
|
FABACEAE |
Prosopis ruscifolia |
Coriácea |
Microfanerófita |
28 |
80 |
|
FABACEAE |
Prosopis nigra |
Microfanerófita |
12 |
44 |
||
FABACEAE |
Parkinsonia praecox |
Microfanerófita |
4 |
36 |
||
FABACEAE |
Geoffroea decorticans |
Microfanerófita |
0 |
20 |
||
FABACEAE |
Mimosa detinens |
Microfanerófita |
0 |
244 |
||
FABACEAE |
Senegalia praecox |
Microfanerófita |
0 |
448 |
||
OLACACEAE |
Ximenia americana |
Nanofanerófita |
0 |
4 |
||
RHAMNACEAE |
Sarcomphalus mistol |
Microfanerófita |
0 |
80 |
||
RHAMNACEAE |
Condalia microphylla |
Coriácea |
Nanofanerófita |
0 |
28 |
|
SOLANACEAE |
Lycium athium |
Suculenta |
Nanofanerófita |
1648 |
400 |
|
SOLANACEAE |
Lycium tenuispinosum |
Suculenta |
Nanofanerófita |
592 |
0 |
|
var. friesii |
||||||
|
|
|
|
|
||
SOLANACEAE |
Lycium americanum |
Suculenta |
Nanofanerófita |
264 |
56 |
|
SOLANACEAE |
Lycium ciliatum |
Suculenta |
Nanofanerófita |
180 |
124 |
|
SOLANACEAE |
Lycium |
Suculenta |
Nanofanerófita |
0 |
8 |
|
boerhaviaefolium |
||||||
|
|
|
|
|
||
VERBENACEAE |
Lippia salsa |
Coriácea |
Caméfita |
432 |
48 |
|
S (Riqueza de especies) |
|
|
|
18 |
28 |
|
S promedio por parcela (100 m2) |
|
|
6,96 * |
10,64 * |
||
sd S |
|
|
|
1,81 |
2,98 |
|
Nº Total de individuos |
|
|
|
1714 |
1205 |
|
Abundancia promedio por parcela |
|
|
68,56 * |
48,2 * |
||
sd abundancia |
|
|
|
36,28 |
9,51 |
|
H´ (Shannon- Wiener) |
|
|
|
1,86 |
2,48 |
|
H´ Promedio (Shannon- Wiener) por parcela |
|
|
1,47 * |
1,93 * |
||
sd H´ |
|
|
|
0,22 |
0,32 |
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M. E. Figueroa et al. - Nanofanerófitas suculentas y salinidad
Fig. 3. Especies arbustivas leñosas de hojas suculentas relevadas en los muestreos del matorral y bosque. A. Allenrolfea vaginata. B. Grahamia bracteata. C. Lycium athium. D. Lycium tenuispinosum. E. Lycium americanum. F. Lycium ciliatum.
cambios en las condiciones de salinidad edáfica. En la figura 6 se esquematizan los principales
resultados encontrados. Los tenores de salinidad del suelo de ambos sitios fueron elevados y mostraron un aumento en profundidad. El valor
de CE ponderado por la profundidad fue mayor en el matorral. La expresión de la vegetación fue diferente en ambas comunidades, con notables diferencias en la complejidad estructural, la riqueza y diversidad de especies leñosas. La
285
Bol. Soc. Argent. Bot. 54 (2) 2019
Fig. 4. A. Lycium boerhaviaefolium. B. Alternanthera nodifera. C. Cyclolepis genistoides. D. Maytenus vitis- idaea. E. Ehretia cortesia.
comparación de la cantidad de especies de hojas suculentas y nanofanerófitas entre comunidades resultó en un bajo número de especies comunes o compartidas. La descripción porcentual de la abundancia de individuos por cada categoría de rasgo a nivel de comunidad, indicó una
marcada predominancia de ciertas categorías en el matorral, en tanto que en el bosque la distribución fue más equitativa. La clasificación de las especies, considerando simultáneamente ambos rasgos, permitió identificar seis grupos de leñosas. La distribución de las abundancias de los
286
M. E. Figueroa et al. - Nanofanerófitas suculentas y salinidad
Tabla 3. Tabla de contingencia para los rasgos forma de vida y consistencia de hoja. Entre paréntesis
número de grupo asignado a las especies con rasgos comunes.
Forma de vida |
|
Consistencia de hoja |
|
||
Coriácea |
Suculenta |
Total |
|||
|
|||||
Caméfita |
1 (G6) |
0 |
2 (G5) |
3 |
|
Mesofanerófita |
1 (G6) |
1 (G6) |
0 |
2 |
|
Nanofanerófita |
2 (G6) |
3 (G4) |
9 (G3) |
14 |
|
Microfanerófita |
3 (G2) |
9 (G1) |
0 |
12 |
|
Total |
7 |
13 |
11 |
31 |
Tabla 4. Abundancia absoluta y relativa de grupos de leñosas por parcela en el matorral halófito. Total de
individuos por grupo; abundancia relativa en valores decimales; sd: desvío estándar.
Parcela |
|
|
Grupos de leñosas por parcela en el matorral halófito |
|
|
Total |
|||||||
G1 |
|
G2 |
G3 |
|
G4 |
|
G5 |
|
G6 |
||||
|
|
|
|
|
|
||||||||
1 |
0 |
0 |
0 |
0 |
91 |
0,827 |
11 |
0,1 |
2 |
0,018 |
6 |
0,055 |
110 |
2 |
0 |
0 |
0 |
0 |
80 |
0,899 |
0 |
0 |
1 |
0,011 |
8 |
0,090 |
89 |
3 |
0 |
0 |
0 |
0 |
79 |
0,814 |
4 |
0,041 |
0 |
0 |
14 |
0,144 |
97 |
4 |
0 |
0 |
0 |
0 |
140 |
0,791 |
11 |
0,062 |
0 |
0 |
26 |
0,147 |
177 |
5 |
0 |
0 |
0 |
0 |
78 |
0,876 |
5 |
0,056 |
0 |
0 |
6 |
0,067 |
89 |
6 |
0 |
0 |
0 |
0 |
65 |
0,855 |
2 |
0,026 |
1 |
0,013 |
8 |
0,105 |
76 |
7 |
0 |
0 |
0 |
0 |
100 |
0,735 |
27 |
0,199 |
1 |
0,007 |
8 |
0,059 |
136 |
8 |
0 |
0 |
0 |
0 |
52 |
0,754 |
16 |
0,232 |
0 |
0 |
1 |
0,014 |
69 |
9 |
0 |
0 |
0 |
0 |
61 |
0,968 |
0 |
0 |
0 |
0 |
2 |
0,032 |
63 |
10 |
0 |
0 |
0 |
0 |
33 |
1 |
0 |
0 |
0 |
0 |
0 |
0 |
33 |
11 |
0 |
0 |
0 |
0 |
20 |
0,833 |
1 |
0,042 |
0 |
0 |
3 |
0,125 |
24 |
12 |
0 |
0 |
0 |
0 |
39 |
0,830 |
8 |
0,170 |
0 |
0 |
0 |
0 |
47 |
13 |
0 |
0 |
1 |
0,018 |
42 |
0,764 |
12 |
0,218 |
0 |
0 |
0 |
0 |
55 |
14 |
2 |
0,034 |
2 |
0,034 |
23 |
0,397 |
30 |
0,517 |
0 |
0 |
1 |
0,017 |
58 |
15 |
0 |
0 |
0 |
0 |
61 |
1 |
0 |
0 |
0 |
0 |
0 |
0 |
61 |
16 |
1 |
0,01 |
1 |
0,01 |
97 |
0,97 |
1 |
0,01 |
0 |
0 |
0 |
0 |
100 |
17 |
0 |
0 |
0 |
0 |
43 |
0,956 |
0 |
0 |
0 |
0 |
2 |
0,044 |
45 |
18 |
0 |
0 |
0 |
0 |
32 |
0,727 |
3 |
0,068 |
0 |
0 |
9 |
0,205 |
44 |
19 |
0 |
0 |
1 |
0,034 |
18 |
0,621 |
7 |
0,241 |
0 |
0 |
3 |
0,103 |
29 |
20 |
0 |
0 |
0 |
0 |
58 |
0,892 |
2 |
0,031 |
0 |
0 |
5 |
0,077 |
65 |
21 |
0 |
0 |
1 |
0,021 |
45 |
0,957 |
0 |
0 |
0 |
0 |
1 |
0,021 |
47 |
22 |
2 |
0,182 |
0 |
0 |
9 |
0,818 |
0 |
0 |
0 |
0 |
0 |
0 |
11 |
23 |
0 |
0 |
1 |
0,018 |
43 |
0,768 |
4 |
0,071 |
0 |
0 |
8 |
0,143 |
56 |
24 |
0 |
0 |
2 |
0,027 |
70 |
0,946 |
0 |
0 |
0 |
0 |
2 |
0,027 |
74 |
25 |
1 |
0,017 |
2 |
0,034 |
54 |
0,915 |
2 |
0,034 |
0 |
0 |
0 |
0 |
59 |
Total |
6 |
0,243 |
11 |
0,197 |
1433 |
20,914 |
146 |
2,119 |
5 |
0,050 |
113 |
1,476 |
1714 |
Promedio |
0,24 |
0,010 |
0,44 |
0,008 |
57,32 |
0,837 |
5,84 |
0,085 |
0,2 |
0,002 |
4,52 |
0,059 |
|
sd |
0,597 |
0,037 |
0,712 |
0,013 |
30,195 |
0,133 |
8,194 |
0,121 |
0,5 |
0,005 |
5,875 |
0,059 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
287
Bol. Soc. Argent. Bot. 54 (2) 2019
Tabla 5. Abundancia absoluta y relativa de grupos de leñosas por parcela en el bosque xerófito. Total de
individuos por grupo; abundancia relativa en valores decimales; sd: desvío estándar.
Parcela |
|
|
Grupos de leñosas por parcela en el bosque xerófito |
|
|
Total |
|||||||
|
G1 |
G2 |
|
G3 |
|
|
G4 |
|
G5 |
G6 |
|||
|
|
|
|
|
|
|
|||||||
1 |
24 |
0,52 |
0 |
0 |
9 |
0,20 |
0 |
0 |
0 |
0 |
13 |
0,283 |
46 |
2 |
26 |
0,54 |
1 |
0,02 |
3 |
0,06 |
0 |
0 |
0 |
0 |
18 |
0,375 |
48 |
3 |
34 |
0,67 |
0 |
0,00 |
2 |
0,04 |
1 |
0,02 |
0 |
0 |
14 |
0,275 |
51 |
4 |
21 |
0,34 |
2 |
0,03 |
33 |
0,54 |
0 |
0,00 |
0 |
0 |
5 |
0,082 |
61 |
5 |
5 |
0,14 |
3 |
0,09 |
24 |
0,69 |
2 |
0,06 |
0 |
0 |
1 |
0,029 |
35 |
6 |
12 |
0,24 |
4 |
0,08 |
26 |
0,53 |
0 |
0,00 |
0 |
0 |
7 |
0,143 |
49 |
7 |
4 |
0,06 |
2 |
0,03 |
49 |
0,78 |
1 |
0,02 |
0 |
0 |
7 |
0,111 |
63 |
8 |
27 |
0,55 |
0 |
0,00 |
1 |
0,02 |
0 |
0,00 |
0 |
0 |
21 |
0,429 |
49 |
9 |
18 |
0,46 |
1 |
0,03 |
7 |
0,18 |
0 |
0,00 |
0 |
0 |
13 |
0,333 |
39 |
10 |
15 |
0,38 |
1 |
0,03 |
5 |
0,13 |
3 |
0,08 |
0 |
0 |
15 |
0,385 |
39 |
11 |
13 |
0,33 |
0 |
0,00 |
10 |
0,26 |
0 |
0,00 |
0 |
0 |
16 |
0,410 |
39 |
12 |
16 |
0,34 |
5 |
0,11 |
16 |
0,34 |
0 |
0,00 |
0 |
0 |
10 |
0,213 |
47 |
13 |
25 |
0,63 |
0 |
0,00 |
1 |
0,03 |
0 |
0 |
0 |
0 |
14 |
0,35 |
40 |
14 |
13 |
0,37 |
0 |
0 |
12 |
0,34 |
0 |
0 |
0 |
0 |
10 |
0,286 |
35 |
15 |
8 |
0,16 |
3 |
0,06 |
30 |
0,60 |
2 |
0,04 |
0 |
0 |
7 |
0,14 |
50 |
16 |
21 |
0,51 |
0 |
0,00 |
5 |
0,12 |
0 |
0 |
0 |
0 |
15 |
0,366 |
41 |
17 |
30 |
0,59 |
0 |
0,00 |
2 |
0,04 |
0 |
0 |
0 |
0 |
19 |
0,373 |
51 |
18 |
21 |
0,51 |
1 |
0,02 |
5 |
0,12 |
0 |
0 |
0 |
0 |
14 |
0,341 |
41 |
19 |
4 |
0,08 |
3 |
0,06 |
33 |
0,62 |
0 |
0 |
4 |
0,08 |
9 |
0,170 |
53 |
20 |
14 |
0,19 |
0 |
0,00 |
49 |
0,66 |
0 |
0 |
1 |
0,01 |
10 |
0,135 |
74 |
21 |
18 |
0,47 |
0 |
0,00 |
3 |
0,08 |
0 |
0 |
0 |
0,00 |
17 |
0,447 |
38 |
22 |
37 |
0,76 |
0 |
0,00 |
1 |
0,02 |
0 |
0 |
0 |
0,00 |
11 |
0,224 |
49 |
23 |
22 |
0,41 |
1 |
0,02 |
24 |
0,44 |
0 |
0 |
0 |
0,00 |
7 |
0,130 |
54 |
24 |
21 |
0,40 |
3 |
0,06 |
19 |
0,36 |
0 |
0 |
1 |
0,02 |
9 |
0,170 |
53 |
25 |
30 |
0,50 |
0 |
0 |
16 |
0,27 |
0 |
0 |
0 |
0 |
14 |
0,233 |
60 |
Total |
479 |
10,16 |
30 |
0,63 |
385 |
7,46 |
9 |
0,21 |
6 |
0,11 |
296 |
6,431 |
1205 |
Promedio |
19,2 |
0,41 |
1,20 |
0 |
15,40 |
0,30 |
0,36 |
0 |
0,24 |
0 |
11,84 |
0,257 |
|
sd |
9,0 |
0,18 |
1,50 |
0 |
14,62 |
0,24 |
0,81 |
0 |
0,83 |
0 |
4,76 |
0,121 |
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
|
grupos presentó una diferencia significativa entre las comunidades. La diferencia en la distribución de los grupos puede ser explicada mediante la asociación con las variables CE y pH del suelo.
Las microfanerófitas de hojas
288
M. E. Figueroa et al. - Nanofanerófitas suculentas y salinidad
Fig. 5. Gráfico biplot del análisis de redundancia, RDA, que relaciona las variables edáficas (CE20, CE50, pH20, pH50) y los seis grupos de plantas (G1 al G6). CE20: conductividad eléctrica de los primeros 20 cm de profundidad del suelo; CE50: conductividad eléctrica de 20 a 50 cm de profundidad del suelo; pH20: pH de los primeros 20 cm de profundidad del suelo; pH50: pH de 20 a 50 cm de profundidad del suelo. G1: microfanerófitas con hojas
Fig. 6. Esquema de las características de las comunidades de leñosas de matorral y bosque. Grupos de plantas dominantes en cada comunidad: G3: nanofanerófitas de hojas suculentas y G1: microfanerófitas con hojas
289
Bol. Soc. Argent. Bot. 54 (2) 2019
DISCUSIÓN Y CONCLUSIONES
En el matorral y el bosque los valores de conductividad eléctrica estuvieron por encima de los umbrales críticos para considerar un suelo salino (8 y 15 dS/m, FAO, 2006). Los cambios observados en la estructura de la vegetación entre ambos sitios se corresponden con los descriptos frecuentemente a lo largo de gradientes de salinidad (Ragonese, 1951; Díaz & Cabido, 1997; Vendramini et al., 2002;
La baja medida de similitud entre ambos sitios, según el valor del coeficiente de Sørensen, estuvo relacionada con cambios en la abundancia más que con el número de especies compartidas tanto de hojas suculentas como de nanofanerófitas. El índice de Sørensen cuantitativo es empleado como una medida de diversidad beta entre dos comunidades, sustrayendo el resultado de 1; de esta manera indica el grado de cambio o reemplazo en la composición de especies entre diferentes comunidades en un paisaje (Moreno, 2001; Magurran, 2004). Así, la diversidad beta fue alta
Entre las leñosas relevadas las microfanerófitas de hojas
gradientes de disponibilidad hídrica donde las plantas de hojas coriáceas con bajo contenido de agua están asociadas a condiciones de estrés hídrico (Díaz & Cabido, 1997; Vendramini et al., 2002). Es frecuente entre las especies esclerófilas con baja área foliar específica y alto espesor foliar (Vendramini et al., 2002). En cambio, las plantas de hojas herbáceas con área foliar específica alta, alto contenido de agua y bajo espesor foliar, suelen estar asociadas a ambientes con mayor disponibilidad hídrica (Vendramini et al., 2002). Sin embargo, en floras con suculentas, un mayor contenido de agua de la hoja no está asociado a una mayor disponibilidad hídrica, sino que es un rasgo respuesta a condiciones de estrés salino (Díaz & Cabido, 1997; Vendramini et al., 2002; García et al., 2008; Pérez Cuadra & Cambi, 2014). Por lo cual, una alta densidad de individuos con este rasgo podría indicar condiciones de alta salinidad.
Entre las especies de la región Chaqueña los tipos de hoja carnosa,
Apesar de que puede existir una fuerte asociación taxonómica entre las especies de un grupo funcional, la relevancia ecológica de los mismos no se modifica (Díaz & Cabido, 1997). En el G1 fueron dominantes especies de porte arbustivo, arbóreo y de hojas
290
M. E. Figueroa et al. - Nanofanerófitas suculentas y salinidad
cinco especies típicas de la región chaqueña. Las tres especies del G4, más abundantes en el matorral, al igual que las del G1 poseen hojas
En el G5, Alternanthera nodifera y Ehretia cortesia son especies halófitas de hojas suculentas importante forrajeras (Gottschling & Hilger, 2004; Cavanna et al., 2010), estuvieron escasamente representadas en ambos sitios. En el grupo G6, las cinco especies pertenecen a familias distintas, dos son especies arbóreas del dosel del bosque Chaqueño, Schinopsis lorentzii y Aspidosperma
Otros autores han propuesto modelos conceptuales para ambientes salinos basados en la vegetación como bioindicador de las condiciones edáficas
versus no suculenta (Moreno et al., 2018). Estas especies suelen ser las primeras colonizadoras bajo la más alta salinidad del suelo (Álvarez- Rogel et al., 2006).
CONTRIBUCIÓN DE LOS AUTORES
MEF realizó la investigación, análisis, recolección e interpretación de datos, preparación de las figuras, redacción del manuscrito. JGM realizó la conceptualización de la investigación. GL realizó el diseño de muestreo, recolección de muestras, análisis en laboratorio y descripción taxonómica del suelo. AMG gestionó y coordinó la planificación y ejecución de la investigación. Todos los autores participaron en la interpretación de los resultados y redacción del manuscrito.
BIBLIOGRAFÍA
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